التركيب النسيجي والقياسات الميكرومترية لجلد المنطقة الجانبية للأسماك المصطادة من ساحل مدينة مصراتة Chelon labrosus
الملخص
يحمي جلد الأسماك الأعضاء الداخلية، ويحافظ على الضغط الأسموزي بالإضافة لدوره المهم كمؤشر على صحة الأسماك. أخذت عينات الجلد (0.5x0.5 سم2) من المنطقة الظهرية لخمسة أسماك (Chelon labrosus)، وتبثث مباشرة في 10% فورمالين لمدة 24 ساعة. تم أجريت العمليات الروتينية لإعداد الأنسجة والقطاعات (5 ميكروميتر)، وصبغت باستخدام الهيماتوكسيلين والأيوسين (H&E). للفحص النسيجي والقياسات الميكرومترية استخدم مجهر ضوئي مزود بكاميرا رقمية (Motic BA310Digetal). الفحص النسيجي يظهر البشرة المكونة من طلائية متعددة الطبقات تتوضع على غشاء قاعدي، وتشمل خلايا البشرة المخاطية (Mucus cells) والخلايا الصولجانية (Club cells) التي تعمل على افراز المخاط على سطح الجلد. إضافة إلى ذلك، توجد طبقة مولدة (مكعبة) في عمق طبقة البشرة وتظهر محتوية على أنوية كثيفة بالمادة النووية (Dense chromatin). النتائج اظهرت الادمة المكونة من طبقة مفككة (Stratum spongiosum)، وطبقة مضغوطة (Stratum compactum). علاوة على ذلك لوحظ في طبقة الدمة انتشار ألياف غروية غير منتظمة (Dense irregular collagen fibres)، وخلايا لونية (Melanophores)، وبعض الأوعية الدموية. طبقة تحت الجلد (Subcutaneous) عبارة عن نسيج دهني يحتوي خلايا دهنية (Adipocytes) وأوعية دموية. تشير بنية جلد أسماك الدراسة لإمكانية مشاركته في التنفس والحماية.
الكلمات المفتاحية:
بشرة
أدمة
خلايا اللونية
خلايا لونية
ألياف غروية
كيفية الاقتباس
د. إسماعيل محمد الهمالي, أ. عادل عمر أبودبوس, & أ. تهاني رحيل عبدالواحد. (2022). التركيب النسيجي والقياسات الميكرومترية لجلد المنطقة الجانبية للأسماك المصطادة من ساحل مدينة مصراتة Chelon labrosus. مجلة جامعة بني وليد للعلوم الإنسانية والتطبيقية, 7(2), 199-209. https://doi.org/10.58916/jhas.v7i2.532
إصدار
القسم
Article
المراجع
1.
الهمالي، إسماعيل محمد، أبودبوس، عادل عمر، شبش، الهمالي حسين، الفقيه، نجلاء عبدالفتاح، حنيش، فتحية. 2017. دراسة الشكل الظاهري والنسيجي لكبد أسماك التونا الزرقاء مصراتة – ليبيا. مجلة كلية التربية، جامعة مصراتة. المجلد 3، العدد 9. 377-390.
2.
Dauod, H. A. M.; A-Amerri, R. A. and Al-Nakeebl, D. A. 2009. Histological Structure of the integument in Mystus pelusius (Solander). J. Madent alelem. Vol. 1(1): 1-17.
3.
Douglas, P. C.; Brian, D. W.; Carrie, J. H.; Tracy, A. M.; Robin, C. K.; Susan, G. W. K.; Kristin, L. J.; Maud, C. O. F.; Robyn J Pollock, Colin F Halbgewachs, Michael S. Pollock, Shireen Alemadi, Clayton T James, Rachel K Savaloja, Cameron P Goater, Amber Corwin, Reehan S Mirza, Joseph M Kiesecker, Grant E Brown, James C Adrian, Jr, Patrick H Krone, Andrew R Blaustein and Alicia Mathis 2009. Epidermal 'alarm substance' cells of fishes maintained by non-alarm functions: possible defence against pathogens, parasites and UVB radiation. Proc. Vol. 274, 2611-2619. doi: 10.1098/rspb.2007.0709.
4.
Douglas, P. C.; Brian, D. W.; Carrie, J. H.; Tracy, A. M.; Robin, C. K.; Susan, G. W. K.; Kristin, L. J.; Maud, C. O. F.; Robyn J Pollock, Colin F Halbgewachs, Michael S. Pollock, Shireen Alemadi, Clayton T James,
5.
Elliott D. G. 2000. Integumentary system: Microscopic functional anatomy. Ostrander (ed.) The Laboratory Fish. Academic Press, London. Pp 271-306.
6.
Elliott, D. G. 2011. The skin, Functional Morphology of the Integumentary System in Fishes. Encyclopedia of Fish Physiology: From Genome to Environment, pp.476-488. DOI:10.1016/B978-476.
7.
Farrell, A. P. 2011. The Many Functions of Fish Integument. In Encyclopedia of Fish Physiology: From Genome to Environment, volume 1,pp. 471- 475.
8.
FishBase, available at: https://www.fishbase.se/search.php. [Online September, 2022].
9.
Kim, H. T. 2022. Histology and morphometry of the skin of the trident goby Tridentiger brevispinis (Perciformes, Gobiidae). Applied Microscopy. Vol. 52: 2-7.
10.
Lindesjoo, E.; Thulin, J. 1994. Histopathology of skin and gills of fish in pulp mill effluents, Dis. Aquat. Org., Vol. 18: 81-93.
11.
Mohamed, M.; Abdi, R. and Basir, Z. 2020. Comparative histomorphometry of dorsal, ventral and lateral skin in macroscopy, microscopy and free scale fish. Biology, Environmental Science. DOI:10.22055/IVJ.2019.194902.2168.
12.
Pandey, S.; Stockwell, C. A.; Snider, M. R. and Wisenden, B. D. 2021. Epidermal Club Cells in Fishes: A Case for Ecoimmunological Analysis. International Journal of Molecular Sciences. Vol. 22(3): 2-25. doi: 10.3390/ijms22031440.
13.
Park,J. Y.; Kim, I. and Kim, S. 2000. Histology of Skin of the Amphibious fish, Periophthalmus modestus. Korean J Biol Sci Vol. 4: 315 -318
14.
Putri, R. A. and Sukiya. 2017. Comparative microanatomical structure of gills and skin of remainers and skippers from Gunung Kidul intertidal zone. AIP Conference Proceedings 1868, 090012. Doi.org/10.1063/1.4995204.
15.
Vieiara, F. A.; Gregório, S. F.; Ferraresso, S.; Thorne, M. A. S.; Costa, R.; Milan. M. 2011. Skin healing and scale regeneration in fed and unfed sea bream, Sparus auratus. BMC Genom. DOI: 10.1186/1471-2164-12-490.
16.
Witkowski, A; Kaleta, K.; Kuryszko, J.; and Kusznierz, J. 2004. Histological structure of the skin of Arctic charr, Salvelinus alpinus (L.) from Spitsbergen, Acta Ichthyologica Et Piscatoria 34(2):241-251. DOI:10.3750/AIP2004.34.2.11.
17.
Yang, S.; Fu, H. M.; Xiao, Q.; Liu, Q; Wang, Y.; Yan, T.M.; Zhou, J.; Liu, Y.; Gong, Q. and Zhao, L. L. 2019. The structure of the skin, types and distribution of mucous cell of Yangtze sturgeon (Acipenser dabryanus). Int. J. Morphol., 37(2): 541-547.
18.
Yoshizawa, M.; Jeffery, W. R.; Netten, S. M. V. and McHenry, M. J. 2014. The sensitivity of lateral line receptors and their role in the behavior of Mexican blind cavefish (Astyanax mexicanus). J. Exp. Biol. Vol. 217(6): 886–895. DOI: 10.1242/jeb.094599.
19.
World Register of Marine Species, WoRMS. Avilable at: https://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=126977. [Online February, 2023].
20.
Zaccone, G.; Kapoor, B. G.; Fasulo, S. and Ainis, L. 2001. Structural, histochemical and functional aspects of the epidermis of fishes. In Advances in Marine Biology (Southward, A. J., Tyler, P. A., Young, C. M. & Fuiman, L. A., eds), pp. 253–348. London: Academic Press.
